Objetivos
Contenidos
Objetivos
– Aplicar técnicas de administración de sustancias a animales y registro de datos, según protocolos establecidos, normas de seguridad y prevención de riesgos.
– Precisar factores que pueden interferir en los resultados de los procedimientos de experimentación, especificando signos y comportamientos animal anómalos que deben detectarse para no alterar los resultados de los procedimientos.
– Analizar signos de sufrimiento, dolor y angustia de animales de experimentación, relacionándolos con la alteración de parámetros fisiológicos.
– Aplicar técnicas de necropsia en animales utilizados en experimentación recogiendo muestras de tejidos y registrando los datos según procedimientos para su evaluación postmorten.
– Aplicar técnicas de obtención y almacenamiento de datos de investigación mediante el empleo de sistemas manuales y electrónicos
– Aplicar procedimientos de anestesia, general o local, y analgesia en función de la especie animal y experimento
– Aplicar técnicas de preparación de la cirugía según la especie animal y procedimiento experimental a desarrollar
– Aplicar técnicas quirúrgicas básicas en procedimientos experimentales de acuerdo con protocolos establecidos.
– Precisar factores que pueden interferir en los resultados de los procedimientos de experimentación, especificando signos y comportamientos animal anómalos que deben detectarse para no alterar los resultados de los procedimientos.
– Analizar signos de sufrimiento, dolor y angustia de animales de experimentación, relacionándolos con la alteración de parámetros fisiológicos.
– Aplicar técnicas de necropsia en animales utilizados en experimentación recogiendo muestras de tejidos y registrando los datos según procedimientos para su evaluación postmorten.
– Aplicar técnicas de obtención y almacenamiento de datos de investigación mediante el empleo de sistemas manuales y electrónicos
– Aplicar procedimientos de anestesia, general o local, y analgesia en función de la especie animal y experimento
– Aplicar técnicas de preparación de la cirugía según la especie animal y procedimiento experimental a desarrollar
– Aplicar técnicas quirúrgicas básicas en procedimientos experimentales de acuerdo con protocolos establecidos.
Contenidos
MÓDULO 1. Procedimientos Experimentales con Animales
UNIDAD FORMATIVA 1. INVESTIGACIÓN CON ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
UNIDAD DIDÁCTICA 1. UTILIZACIÓN DE ANIMALES COMO MODELOS EXPERIMENTALES
Justificación de experimentación con animales de laboratorio:
– Referencias históricas, momentos y personajes claves en la utilización de animales como modelos experimentales
– Logros conseguidos en las ciencias biomédicas
– Búsqueda de otras alternativas. Razones científicas y éticas
Principio de las 3Rs:
– Reducción
– Refinamiento
– Reemplazo
Clasificación de los métodos alternativos:
– Modelos computerizados de predicción «in silico»
– Uso de organismos inferiores.
– Uso de huevos
– Métodos «in Vitro»
– Otros
Aspectos éticos y normativos de los cuidados proporcionados a los animales de experimentación.
– Transformación, limitación y percepción social
– Actitud del investigador frente al animal como sujeto
– Reconocimiento del animal como reactivo biológico
– Obtención de animales biológicamente estandarizados
Normativa sobre protección de animales utilizados para experimentación y otros fines científicos: seguridad, administración, transporte, recepción, aprovisionamiento de animales y eliminación de los cadáveres.
– Control social de la investigación
– Legislación Nacional y Europea
– Aspectos básicos de legislación
– Objetivo de la legislación
Normativa sobre: acreditación, elaboración y cumplimiento de los procedimientos de los laboratorios de ensayos clínicos.
– Seguimiento de Protocolos Normalizados de Procedimientos
Prevención de riesgos laborales en los procedimientos experimentales con animales:
– Niveles de bioseguridad
– Técnicas y prácticas de laboratorio
– Equipos de seguridad biológica.
Análisis de signos y comportamiento animal anómalos que interfieran en los procedimientos.
– Detección del dolor, signos de sufrimiento y angustia de animales de experimentación, siguiendo Protocolos Normalizados de revisión
– Conocimiento del aspecto normal de las distintas especies animales
– Pautas de observación del animal: Aspecto exterior, sonidos, movimientos, comportamiento y relación social
– Observación de la jaula o habitáculo, del lecho, cantidad de comida y agua ingerida, etc.
– Determinación cualitativa de la alteración de parámetros fisiológicos: pérdida o aumento de peso, ritmo de la respiración, temperatura, etc.
UNIDAD DIDÁCTICA 2. ADMINISTRACIÓN DE SUSTANCIAS EN LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
Administración de sustancias:
– Soluciones a administrar, principales solventes.
– Características de las soluciones, concentración, osmolaridad y pH.
Clasificación de las vías de administración de sustancias:
– Enteral
– Parenteral
– Tópica
– Inhalatoria
Factores para la elección de la vía:
– Velocidad de absorción de sustancias
– Tolerancia
– Facilidad de su administración según recursos materiales y humanos
Relación de material existente en el mercado:
– Jeringas, conexiones, catéteres y sondas
– Agujas: tipos y escala de medición
– Bombas de infusión mecánicas y electrónicas
– Bombas de infusión osmótica o volumétricas
– Pomadas y geles
– Vaporizadores y nebulizadores
Selección del material necesario para la administración de sustancias en función de:
– Sustancia a administrar.
– Volumen
– Especie animal
– Vía de inoculación
Volumen máximo de inyección según:
– Especie animal
– Vía de administración
Inmovilización de los animales para la administración de sustancias.
– Manejo e inmovilización minimizando estrés
– Material de inmovilización
Administración crónica de sustancias.
– Sistemas de infusión continua: anclados y ambulatorios
UNIDAD DIDÁCTICA 3. OBTENCIÓN DE FLUIDOS Y TEJIDOS CORPORALES DE LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
Extracción de sangre:
– Volumen máximo de extracción, según vía y especie animal
– Técnica de recogida de sangre
Métodos de extracción de sangre, ventajas e inconvenientes:
– Exanguinación
– Decapitación
– Del corazón
– De venas
– De arterias
– Métodos no recomendados de venopunción
– Obtención repetida de sangre: Cateterización
Formas de obtención de otros fluidos corporales:
– Heces y orina: jaulas metabólicas o sondas
– Líquido cefalorraquídeo
– Bilis
– Linfa.
– Líquido ascítico
Realización de eutanasia
– Definición y aspectos relacionados
– Métodos de eutanasia adecuados según la especie y la experimentación
– Identificación de equipos, instrumental y Materiales necesarios
Asistencia a una necropsia:
– Técnicas de necropsia siguiendo procedimientos establecidos
– Preparación del instrumental y material necesarios
– Recogida de muestras
– Registro de datos
Conocimiento de la normativa de:
– Protección frente a agentes químicos, biológicos y radiológicos
– Tratamiento y eliminación de residuos
Acciones para una correcta gestión de residuos:
– Segregación (recogida selectiva).
– Transporte y almacenamiento en la instalación
– Tratamiento previo a la eliminación
– Eliminación del residuo en la instalación productora o gestor autorizado
UNIDAD DIDÁCTICA 4. REGISTRO DE DATOS DE INVESTIGACIÓN EN EXPERIMENTACIÓN ANIMAL
Monitorización: determinación y registro de variables fisiológicas
– Exploración clínica: observación palpación y auscultación
– Uso de equipos: Métodos invasivos y no invasivos
Análisis de los resultados obtenidos en un procedimiento experimental
– Uso de programas informáticos específicos para el procedimiento experimental.
– Análisis estadístico en función del tipo de parámetro
Registro de tratamientos o de administración de sustancias y de obtención de muestras.
– Establecimiento previo al procedimiento del sistema de recogida de datos
– Características de un registro de datos: escrito o automatizado, duradero (copias de seguridad), completo, accesible, hojas específicas o bases de datos debidamente confeccionadas según datos, normalizados, establecer responsable de la conservación del archivo, etc.
Clasificación de los sistemas de instrumentación según sus objetivos:
– De adquisición de la información
– Diagnósticos
– De evaluación
– De monitorización y control
Identificación de los componentes del sistema global animal-instrumento:
– Animal: diferentes generadores de señales
– Estímulos: Visuales, acústicos, táctiles, eléctricos, etc.
– Transductor: sensibilidad, linealidad, respuesta en frecuencias (lineal, integrador y diferenciador) y rendimiento
– Equipo de tratamiento o procesado de una señal
– Equipo de presentación, lectura o registro: registros mecánicos o electrónicos
– Equipo de control automático de los estímulos, de los transductores, etc.
Problemas y soluciones en la medición de la actividad de los seres vivos:
– Inaccesibilidad de las variables
– Variabilidad de los datos
– Interrelaciones entre variables
– Interacción entre órganos y sistemas
– Efecto del transductor sobre la medición a realizar
– Artefactos en las medidas
– Limitaciones de la energía
Utilización de transductores para la medida de las principales variables biológicas:
– Temperatura
– Fuerza, desplazamiento, velocidad y aceleración
– Presión sanguínea
– Volumen y presión respiratoria
– Flujo en gases
– Flujo en líquidos
Medición de señales biológicas por biotelemetría:
– Objetivo
– Ventajas
– Componentes de un sistema de biotelemetría
Utilización de procedimientos no quirúrgicos con equipos específicos de estudio o medida de variables:
– Diagnóstico por imagen.
– Telemetría
– Estudios de comportamiento
– Pletismografía
– Otros métodos no invasivos
UNIDAD FORMATIVA 2. ANESTESIA Y ANALGESIA EN ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
UNIDAD DIDÁCTICA 1. ANESTESIA DE LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
Anestesia: Definición y objetivos.
Componentes de la anestesia general y su influencia en los resultados experimentales:
– Hipnosis o sueño
– Analgesia o ausencia de dolor
– Relajación muscular
– Bloqueo de la actividad refleja
– Anestésico ideal
Elección de la técnica anestésica en función de:
– La especie animal
– Estado del animal y objetivo de la investigación
– Tipo de procedimiento
– Duración del procedimiento
– Experiencia del técnico y equipo disponible
Establecimiento de las fases de una técnica anestésica:
– Ayuno
– Preanestesia. Tranquilizantes y anticolinérgicos.
– Anestesia. Inducción y mantenimiento anestésicos
– Postanestesia
Administración de anestésicos inyectables:
– Fármacos y dosis de los mismos
– Vías y modo de administración
Administración de anestésicos inhalatorios:
– Equipamiento
– Tipos de anestésicos inhalatorios
– Eliminación de gases anestésicos.
Medidas de soporte durante la anestesia:
– Intubación endotraqueal e instauración de ventilación artifical
– Implantación de una vía venosa permanente
Recuperación anestésica:
– Pautas para una recuperación normal
– Reversión de la anestesia, utilización de antagonistas
Monitorización de:
– El plano anestésico. Respuesta refleja.
– La oxigenación, circulación y ventilación durante la anestesia.
– La temperatura.
Identificación de las principales complicaciones anestésicas y su tratamiento.
– Extrapolación de una especie a otra
– Adecuación de la profundidad anestésica a las necesidades de la cirugía
– Utilidad de anestesia inhalatoria
UNIDAD DIDÁCTICA 2. ANALGESIA DE LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
Analgesia: Definición y ventajas de su utilización
Reconocimiento y evaluación del dolor:
– Escalas de severidad (gravedad o intensidad de dolor)
– Signos clínicamente valorables: cambios en la actividad, aspecto, temperatura, ingesta, variables fisiológicas y vocalizaciones.
Técnicas de analgesia:
– Principales fármacos analgésicos
– Analgesia polimodal o multimodal
– Analgesia preventiva
– Analgesia local y regional
UNIDAD FORMATIVA 3. TÉCNICAS QUIRÚRGICAS BÁSICAS EN ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
UNIDAD DIDÁCTICA 1. PREPARACIÓN DE LA CIRUGÍA EN EXPERIMENTACIÓN ANIMAL
Planificación de la cirugía:
– Elección y disponibilidad de los animales
– Valoración preoperatoria del estado sanitario del animal
– Preparación del animal
– Comprobación de la disponibilidad de instalaciones quirúrgicas y pre- y post-operatorias
– Elección y preparación del instrumental quirúrgico, aparatos y accesorios
– Preparación del cirujano
Selección del material quirúrgico:
– Agujas quirúrgicas.
– Material de sutura. Sutura absorbible y no absorbible.
– Otros accesorios quirúrgicos.
Anatomía y fisiología general de órganos y sistemas de los animales de laboratorio.
– Datos anatómicos, fisiológicos y biológicos de los animales más utilizados en investigación
UNIDAD DIDÁCTICA 2. APLICACIÓN DE TÉCNICAS QUIRÚRGICAS BÁSICAS EN PROCEDIMIENTOS EXPERIMENTALES
Conocimiento de técnicas quirúrgicas básicas en experimentación animal:
– Corte de la piel y otros tejidos
– Control del sangrado y de la desecación de tejidos y órganos
– Técnicas y nudos de sutura
Aprendizaje de las técnicas quirúrgicas más comunes en la rata:
– Laparotomía
– Accesos a grandes vasos: vena yugular y arteria carótida
– Ovariohisterectomía
– Cesárea
– Castración: ovariectomía y orquiectomía
Procedimientos quirúrgicos de obtención de muestras biológicas.
– Extracción de tejidos sólidos y realización de una biopsia.
– Perfusión de tejidos y órganos.
Supervisión y cuidados postoperatorios:
– Cuidados de la herida
– Complicaciones quirúrgicas postoperatorias
Protocolos de supervisión y determinación de criterios de punto final postquirúrgico de los animales.
– Supervisión diaria de la herida, desinfección y empleo de antibióticos.
– Utilización de analgesia postoperatoria
– Aplicación diaria de escalas de severidad
– Determinación del punto final y eutanasia
UNIDAD FORMATIVA 1. INVESTIGACIÓN CON ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
UNIDAD DIDÁCTICA 1. UTILIZACIÓN DE ANIMALES COMO MODELOS EXPERIMENTALES
Justificación de experimentación con animales de laboratorio:
– Referencias históricas, momentos y personajes claves en la utilización de animales como modelos experimentales
– Logros conseguidos en las ciencias biomédicas
– Búsqueda de otras alternativas. Razones científicas y éticas
Principio de las 3Rs:
– Reducción
– Refinamiento
– Reemplazo
Clasificación de los métodos alternativos:
– Modelos computerizados de predicción «in silico»
– Uso de organismos inferiores.
– Uso de huevos
– Métodos «in Vitro»
– Otros
Aspectos éticos y normativos de los cuidados proporcionados a los animales de experimentación.
– Transformación, limitación y percepción social
– Actitud del investigador frente al animal como sujeto
– Reconocimiento del animal como reactivo biológico
– Obtención de animales biológicamente estandarizados
Normativa sobre protección de animales utilizados para experimentación y otros fines científicos: seguridad, administración, transporte, recepción, aprovisionamiento de animales y eliminación de los cadáveres.
– Control social de la investigación
– Legislación Nacional y Europea
– Aspectos básicos de legislación
– Objetivo de la legislación
Normativa sobre: acreditación, elaboración y cumplimiento de los procedimientos de los laboratorios de ensayos clínicos.
– Seguimiento de Protocolos Normalizados de Procedimientos
Prevención de riesgos laborales en los procedimientos experimentales con animales:
– Niveles de bioseguridad
– Técnicas y prácticas de laboratorio
– Equipos de seguridad biológica.
Análisis de signos y comportamiento animal anómalos que interfieran en los procedimientos.
– Detección del dolor, signos de sufrimiento y angustia de animales de experimentación, siguiendo Protocolos Normalizados de revisión
– Conocimiento del aspecto normal de las distintas especies animales
– Pautas de observación del animal: Aspecto exterior, sonidos, movimientos, comportamiento y relación social
– Observación de la jaula o habitáculo, del lecho, cantidad de comida y agua ingerida, etc.
– Determinación cualitativa de la alteración de parámetros fisiológicos: pérdida o aumento de peso, ritmo de la respiración, temperatura, etc.
UNIDAD DIDÁCTICA 2. ADMINISTRACIÓN DE SUSTANCIAS EN LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
Administración de sustancias:
– Soluciones a administrar, principales solventes.
– Características de las soluciones, concentración, osmolaridad y pH.
Clasificación de las vías de administración de sustancias:
– Enteral
– Parenteral
– Tópica
– Inhalatoria
Factores para la elección de la vía:
– Velocidad de absorción de sustancias
– Tolerancia
– Facilidad de su administración según recursos materiales y humanos
Relación de material existente en el mercado:
– Jeringas, conexiones, catéteres y sondas
– Agujas: tipos y escala de medición
– Bombas de infusión mecánicas y electrónicas
– Bombas de infusión osmótica o volumétricas
– Pomadas y geles
– Vaporizadores y nebulizadores
Selección del material necesario para la administración de sustancias en función de:
– Sustancia a administrar.
– Volumen
– Especie animal
– Vía de inoculación
Volumen máximo de inyección según:
– Especie animal
– Vía de administración
Inmovilización de los animales para la administración de sustancias.
– Manejo e inmovilización minimizando estrés
– Material de inmovilización
Administración crónica de sustancias.
– Sistemas de infusión continua: anclados y ambulatorios
UNIDAD DIDÁCTICA 3. OBTENCIÓN DE FLUIDOS Y TEJIDOS CORPORALES DE LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
Extracción de sangre:
– Volumen máximo de extracción, según vía y especie animal
– Técnica de recogida de sangre
Métodos de extracción de sangre, ventajas e inconvenientes:
– Exanguinación
– Decapitación
– Del corazón
– De venas
– De arterias
– Métodos no recomendados de venopunción
– Obtención repetida de sangre: Cateterización
Formas de obtención de otros fluidos corporales:
– Heces y orina: jaulas metabólicas o sondas
– Líquido cefalorraquídeo
– Bilis
– Linfa.
– Líquido ascítico
Realización de eutanasia
– Definición y aspectos relacionados
– Métodos de eutanasia adecuados según la especie y la experimentación
– Identificación de equipos, instrumental y Materiales necesarios
Asistencia a una necropsia:
– Técnicas de necropsia siguiendo procedimientos establecidos
– Preparación del instrumental y material necesarios
– Recogida de muestras
– Registro de datos
Conocimiento de la normativa de:
– Protección frente a agentes químicos, biológicos y radiológicos
– Tratamiento y eliminación de residuos
Acciones para una correcta gestión de residuos:
– Segregación (recogida selectiva).
– Transporte y almacenamiento en la instalación
– Tratamiento previo a la eliminación
– Eliminación del residuo en la instalación productora o gestor autorizado
UNIDAD DIDÁCTICA 4. REGISTRO DE DATOS DE INVESTIGACIÓN EN EXPERIMENTACIÓN ANIMAL
Monitorización: determinación y registro de variables fisiológicas
– Exploración clínica: observación palpación y auscultación
– Uso de equipos: Métodos invasivos y no invasivos
Análisis de los resultados obtenidos en un procedimiento experimental
– Uso de programas informáticos específicos para el procedimiento experimental.
– Análisis estadístico en función del tipo de parámetro
Registro de tratamientos o de administración de sustancias y de obtención de muestras.
– Establecimiento previo al procedimiento del sistema de recogida de datos
– Características de un registro de datos: escrito o automatizado, duradero (copias de seguridad), completo, accesible, hojas específicas o bases de datos debidamente confeccionadas según datos, normalizados, establecer responsable de la conservación del archivo, etc.
Clasificación de los sistemas de instrumentación según sus objetivos:
– De adquisición de la información
– Diagnósticos
– De evaluación
– De monitorización y control
Identificación de los componentes del sistema global animal-instrumento:
– Animal: diferentes generadores de señales
– Estímulos: Visuales, acústicos, táctiles, eléctricos, etc.
– Transductor: sensibilidad, linealidad, respuesta en frecuencias (lineal, integrador y diferenciador) y rendimiento
– Equipo de tratamiento o procesado de una señal
– Equipo de presentación, lectura o registro: registros mecánicos o electrónicos
– Equipo de control automático de los estímulos, de los transductores, etc.
Problemas y soluciones en la medición de la actividad de los seres vivos:
– Inaccesibilidad de las variables
– Variabilidad de los datos
– Interrelaciones entre variables
– Interacción entre órganos y sistemas
– Efecto del transductor sobre la medición a realizar
– Artefactos en las medidas
– Limitaciones de la energía
Utilización de transductores para la medida de las principales variables biológicas:
– Temperatura
– Fuerza, desplazamiento, velocidad y aceleración
– Presión sanguínea
– Volumen y presión respiratoria
– Flujo en gases
– Flujo en líquidos
Medición de señales biológicas por biotelemetría:
– Objetivo
– Ventajas
– Componentes de un sistema de biotelemetría
Utilización de procedimientos no quirúrgicos con equipos específicos de estudio o medida de variables:
– Diagnóstico por imagen.
– Telemetría
– Estudios de comportamiento
– Pletismografía
– Otros métodos no invasivos
UNIDAD FORMATIVA 2. ANESTESIA Y ANALGESIA EN ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
UNIDAD DIDÁCTICA 1. ANESTESIA DE LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
Anestesia: Definición y objetivos.
Componentes de la anestesia general y su influencia en los resultados experimentales:
– Hipnosis o sueño
– Analgesia o ausencia de dolor
– Relajación muscular
– Bloqueo de la actividad refleja
– Anestésico ideal
Elección de la técnica anestésica en función de:
– La especie animal
– Estado del animal y objetivo de la investigación
– Tipo de procedimiento
– Duración del procedimiento
– Experiencia del técnico y equipo disponible
Establecimiento de las fases de una técnica anestésica:
– Ayuno
– Preanestesia. Tranquilizantes y anticolinérgicos.
– Anestesia. Inducción y mantenimiento anestésicos
– Postanestesia
Administración de anestésicos inyectables:
– Fármacos y dosis de los mismos
– Vías y modo de administración
Administración de anestésicos inhalatorios:
– Equipamiento
– Tipos de anestésicos inhalatorios
– Eliminación de gases anestésicos.
Medidas de soporte durante la anestesia:
– Intubación endotraqueal e instauración de ventilación artifical
– Implantación de una vía venosa permanente
Recuperación anestésica:
– Pautas para una recuperación normal
– Reversión de la anestesia, utilización de antagonistas
Monitorización de:
– El plano anestésico. Respuesta refleja.
– La oxigenación, circulación y ventilación durante la anestesia.
– La temperatura.
Identificación de las principales complicaciones anestésicas y su tratamiento.
– Extrapolación de una especie a otra
– Adecuación de la profundidad anestésica a las necesidades de la cirugía
– Utilidad de anestesia inhalatoria
UNIDAD DIDÁCTICA 2. ANALGESIA DE LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
Analgesia: Definición y ventajas de su utilización
Reconocimiento y evaluación del dolor:
– Escalas de severidad (gravedad o intensidad de dolor)
– Signos clínicamente valorables: cambios en la actividad, aspecto, temperatura, ingesta, variables fisiológicas y vocalizaciones.
Técnicas de analgesia:
– Principales fármacos analgésicos
– Analgesia polimodal o multimodal
– Analgesia preventiva
– Analgesia local y regional
UNIDAD FORMATIVA 3. TÉCNICAS QUIRÚRGICAS BÁSICAS EN ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
UNIDAD DIDÁCTICA 1. PREPARACIÓN DE LA CIRUGÍA EN EXPERIMENTACIÓN ANIMAL
Planificación de la cirugía:
– Elección y disponibilidad de los animales
– Valoración preoperatoria del estado sanitario del animal
– Preparación del animal
– Comprobación de la disponibilidad de instalaciones quirúrgicas y pre- y post-operatorias
– Elección y preparación del instrumental quirúrgico, aparatos y accesorios
– Preparación del cirujano
Selección del material quirúrgico:
– Agujas quirúrgicas.
– Material de sutura. Sutura absorbible y no absorbible.
– Otros accesorios quirúrgicos.
Anatomía y fisiología general de órganos y sistemas de los animales de laboratorio.
– Datos anatómicos, fisiológicos y biológicos de los animales más utilizados en investigación
UNIDAD DIDÁCTICA 2. APLICACIÓN DE TÉCNICAS QUIRÚRGICAS BÁSICAS EN PROCEDIMIENTOS EXPERIMENTALES
Conocimiento de técnicas quirúrgicas básicas en experimentación animal:
– Corte de la piel y otros tejidos
– Control del sangrado y de la desecación de tejidos y órganos
– Técnicas y nudos de sutura
Aprendizaje de las técnicas quirúrgicas más comunes en la rata:
– Laparotomía
– Accesos a grandes vasos: vena yugular y arteria carótida
– Ovariohisterectomía
– Cesárea
– Castración: ovariectomía y orquiectomía
Procedimientos quirúrgicos de obtención de muestras biológicas.
– Extracción de tejidos sólidos y realización de una biopsia.
– Perfusión de tejidos y órganos.
Supervisión y cuidados postoperatorios:
– Cuidados de la herida
– Complicaciones quirúrgicas postoperatorias
Protocolos de supervisión y determinación de criterios de punto final postquirúrgico de los animales.
– Supervisión diaria de la herida, desinfección y empleo de antibióticos.
– Utilización de analgesia postoperatoria
– Aplicación diaria de escalas de severidad
– Determinación del punto final y eutanasia