MF1738_3 TÉCNICAS DE REPRODUCCIÓN EN ANIMALES UTILIZADOS EN PROCEDIMIENTOS EXPERIMENTALES

1. MÓDULO 1. Técnicas de Reproducción en Animales Utilizados en Procedimientos Experimentales

UNIDAD FORMATIVA 1. REPRODUCCIÓN Y CRÍA DE ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN

UNIDAD DIDÁCTICA 1. REPRODUCCIÓN ANIMAL

1. Anatomía del aparato reproductor masculino:
2. – Esquema del aparato reproductor masculino en mamíferos
3. – Órganos, conductos y vías, vesículas y glándulas
4. Fisiología reproductiva masculina:
5. – Desarrollo y funcionamiento del aparato reproductor
6. – Espermatogénesis, almacenamiento y maduración de los espermatozoides
7. Anatomía del aparato reproductor femenino:
8. – Esquema del aparato reproductor femenino en mamíferos
9. – Órganos y conductos
10. – Características anatómicas en las distintas especies de animales de experimentación
11. Fisiología reproductiva femenina:
12. – Desarrollo y funcionamiento del aparato reproductor
13. – Oogénesis y ovulación
14. – Diferencias en la ovulación según la especie: espontánea o inducida
15. Características reproductoras de los principales animales de laboratorio
16. – Vida fértil y edad óptima de cruce
17. – Periodo de gestación
18. – Celo postparto
19. – Pseudogestación
20. – Efecto Witten (sincronización del celo)
21. – Efecto Bruce
22. Fisiología del celo, cubrición y gestación:
23. – Ciclo estral. Fases del ciclo
24. – Hembras poliestricas (anuales y estacionales), biestricas y monoestricas
25. – Cambios fisiológicos y comportamiento de las hembras durante el celo
26. – Influencia en la conducta sexual de los factores: Sociales, ambientales y fisiológicos
27. – Duración del celo y aspectos relacionados con la cubrición según especie animal
28. – Comprobación de la cópula: frotis vaginal o visualización del tapón vaginal
29. – Dónde y cómo se produce la fecundación. Formación del zigoto
30. – Fases de la gestación: huevo, embrión y feto

UNIDAD DIDÁCTICA 2. GESTIÓN DE COLONIAS DE ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN

1. Poblaciones naturales y de laboratorio.
2. – Definición de poblaciones naturales y artificiales
3. – Elementos de genética de poblaciones. Selección de los progenitores
4. – Frecuencias génicas y genotípicas. Ley de Hardy-Weinberg
5. Cría de animales de experimentación.
6. – Sistemas de cruce: monogámico, poligámico y harén
7. – Ventajas e inconvenientes de los distintos sistemas de cruce
8. Protocolos de cruzamiento:
9. – Obtención de animales consanguíneos o Inbred: Programa de líneas paralelas o programa de línea simple
10. – Obtención de animales no consanguíneos u Outbred: Sistema Robertson y Sistema Rotativo o de Poiley
11. – Sistema al azar
12. – Programas de cría de registro y control informatizados de las colonias de animales
13. Destete de animales de las especies utilizadas con mayor frecuencia en investigación.
14. – Tamaño de la camada
15. – Sexado
16. – Edad y peso al destete
17. – Realización de los lotes
18. – Etiquetado
19. Cría de animales transgénicos.
20. – Elección de los progenitores, gestión informatizada, genotipado y crioconservación
21. Organismos modificados genéticamente (OMG).
22. – Legislación y normativa actualizada sobre la utilización de OMG
23. – Precauciones y medidas de contención de animales modificados genéticamente según la especie

UNIDAD DIDÁCTICA 3. GENÉTICA DE LOS ANIMALES DE LABORATORIO

1. Estandarización genética.
2. – Calidad del animal de experimentación: Interacción genotipo-ambiente
3. – Causas que justifican el control de la pureza genética: Mutaciones espontáneas e interacción accidental con otra cepa
4. – Prevención del control de la pureza genética: congelación de embriones y aislamiento físico
5. Factores que afectan la composición genética de las poblaciones de laboratorio:
6. – Selección genética de los animales.
7. – Consanguinidad: concepto, aplicaciones, consecuencias en los animales.
8. – Deriva y variabilidad genética: Definición y consecuencias en la colonia.
9. Animales homocigóticos y heterocigóticos:
10. – Manifestación de un Knock-out en homocigosis
11. – Mantenimiento de líneas transgénicas en heterocigosis y genotipado para detección de homocigóticos
12. Categorías de animales de laboratorio en función de su constitución genética.
13. – Características de las líneas consanguíneas
14. – Líneas genéticamente estandarizadas: Líneas consanguíneas, Híbridos F1, coisogénicas, congénitas, consanguíneas recombinantes (RIS), congénitas recombinantes (RCS), consómicas y conplásticas. Líneas no consanguíneas
15. – Influencia de la genética sobre los resultados experimentales
16. – Aplicaciones específicas en investigación de las distintas categorías genéticas
17. Nomenclatura e identificación de animales. Reglas de nomenclatura internacional
18. – Nomenclatura de las líneas consanguíneas.
19. – Nomenclatura de las líneas coisogéncas y congénitas
20. – Nomenclatura de las líneas consanguíneas recombinantes
21. – Nomenclatura de las líneas cogénicas recombinantes
22. – Nomenclatura de los ratones knock-out
23. – Nomenclatura de los roedores no consanguíneos
24. Transgénesis y mutagénesis dirigida:
25. – Técnicas de obtención de animales transgénicos: Método de microinyección y Método del retrovirus
26. – Técnicas para generar mutaciones heredables en ratón
27. – Creación de ratones Knock-out
28. Genotipado y fenotipado.
29. – Detección de la alteración genética mediante reacción en cadena de polimerasa (PCR)
30. – Equipos para PCR: termocicladorres
31. – Identificación del individuo
32. – Bases de datos fenotípicas internacionales
33. – Métodos de control de la pureza genética de los animales de experimentación:
34. – Marcadores bioquímicos
35. – Marcadores Inmunológicos
36. – Análisis del color del pelaje
37. – Injertos de piel
38. – Caracteres reproductivos
39. – Marcadores de ADN. Fingerprinting de ADN. Análisis de microsatélites por PCR. Otras técnicas moleculares
40. Bases de datos y bancos de animales transgénicos. Gestión a través de programas informáticos
41. – Registro de información individualizada de: Construcción, línea, generación, genotipo, sexo, color, edad, identificación, caracterización fenotípica, progenitores (genealogías), investigación de destino y responsable

UNIDAD FORMATIVA 2. REPRODUCCIÓN ASISTIDA EN ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN

UNIDAD DIDÁCTICA 1. TÉCNICAS NO NATURALES DE REPRODUCCIÓN

1. Obtención de gametos y embriones:
2. – Lavado del epidídimo y los vasos deferentes y esperma eyaculado (lavaje de los cuernos uterinos)
3. – Lavado de oviducto y útero
4. – Conservación de espermatozoides, ovocitos y embriones
5. Técnicas de reproducción asistida:
6. – Ventajas e inconvenientes de la inseminación artificial y la fertilización in vitro
7. Técnicas de la Inseminación artificial:
8. – Inseminación por vía vaginal
9. – Inseminación por vía uterina
10. – Transferencia del esperma dentro del oviducto por procedimiento quirúrgico
11. Etapas de la Inseminación artificial:
12. – Elección de las hembras con elevado índice de fertilidad
13. – Protocolo de superovulación
14. – Sincronización del celo – Inseminación al comienzo del estro
15. – Cruce de hembras con machos vasectomizados – pseudogestación
16. Etapas y técnica de la fecundación in Vitro (FIV):
17. – Medios de cultivo de los gametos, incubación y fecundación
18. – Factores que influyen en la probabilidad de fecundación
19. – Selección y sistemas de control de embriones
20. – Transferencia de embriones: Implantación quirúrgica de los óvulos fecundados
21. Rederivación de embriones:
22. – Objetivo: Mejorar la calidad sanitaria de los animales
23. – Protocolo de rederivación: Superovulación, fertilización natural y transplante de los embriones a una hembra pseudopreñada

UNIDAD DIDÁCTICA 2. CONSERVACIÓN Y CRIOPRESERVACIÓN DE GAMETOS Y EMBRIONES

1. Fundamentos de criobiología.
2. – Principios físicos: temperatura y cambios de estado
3. – Principios químicos: composición de los crioprotectores
4. – Principios biológicos: diferencias entre células, tejidos o especies
5. Equipos y medios de crioconservación.
6. – Equipos de congelación: baños de alcohol, tanques de nitrógeno, congeladores programables, pajuelas, etc.
7. – Dos enfoques para la criopreservación: la congelación controlada (lenta y rápida) y la vitrificación (congelación ultra-rápida)
8. – Medios (crioprotectores): elección y concentración del medio en función de la técnica
9. Objetivos y ventajas de la criopreservación de gametos y embriones:
10. – Prevención de la contaminación genética
11. – Limitación de la deriva genética por la variación en la frecuencia de los genes
12. – Mantenimiento de líneas transgénicas y mutantes a largo plazo
13. – Reducción de costes
14. – Control de las patologías asociadas al mantenimiento animales vivos
15. Ventajas e inconvenientes de la crioconservación de espermatozoides o embriones:
16. – Tiempo
17. – Coste
18. – Recursos materiales
19. Crioconservación de gametos y embriones.
20. – Congelación de esperma: crioprotectores, temperaturas y tiempos específicos
21. – Estrategias de congelación de oocitos: en estado inmaduro (en forma de vesícula germinal) y en estado maduro (después de la ovulación) bajo la forma de oocitos en metafase II, con mayor eficacia.
22. – Embriones: estadío-eficacia del sistema
23. – Sistemas de identificación, registro y mantenimiento de gametos y embriones criopreservados, bancos de embriones y gametos congelados
24. – Medidas preventivas y de protección durante el manejo de productos para la criopreservación.
25. – Control de calidad.