Objetivos
Contenidos
Objetivos
– Aplicar técnicas de extracción, cuantificación y purificación de ADN y/o ARN en muestras biológicas, siguiendo protocolos y normas de seguridad.
– Aplicar técnicas de extracción, cuantificación y purificación de proteínas en muestras biológicas, siguiendo protocolos y normas de seguridad.
– Aplicar técnicas de separación y purificación de fragmentos de ADN y de proteínas mediante electroforesis.
– Aplicar técnicas de separación e identificación de proteínas mediante técnicas de cromatografía, inmunodetección y proteómica.
– Aplicar técnicas de PCR y de RT-PCR, teniendo en cuenta protocolos e indicando sus aplicaciones.
– Aplicar técnicas de hibridación con sondas genéticas y de análisis de fragmentos de ADN, siguiendo protocolos preestablecidos.
– Aplicar la técnica de secuenciación de fragmentos de ADN según protocolos preestablecidos.
– Aplicar técnicas de extracción, cuantificación y purificación de proteínas en muestras biológicas, siguiendo protocolos y normas de seguridad.
– Aplicar técnicas de separación y purificación de fragmentos de ADN y de proteínas mediante electroforesis.
– Aplicar técnicas de separación e identificación de proteínas mediante técnicas de cromatografía, inmunodetección y proteómica.
– Aplicar técnicas de PCR y de RT-PCR, teniendo en cuenta protocolos e indicando sus aplicaciones.
– Aplicar técnicas de hibridación con sondas genéticas y de análisis de fragmentos de ADN, siguiendo protocolos preestablecidos.
– Aplicar la técnica de secuenciación de fragmentos de ADN según protocolos preestablecidos.
Contenidos
MÓDULO 1. Análisis de Biología Molecular en Muestras Biológicas
UNIDAD FORMATIVA 1. TÉCNICAS DE SEPARACIÓN DE ADN, ARN Y PROTEÍNAS DE MUESTRAS BIOLÓGICAS
UNIDAD DIDÁCTICA 1. OBTENCIÓN, MANIPULACIÓN Y PROCESAMIENTO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS PARA ANÁLISIS DE ADN, ARN Y PROTEÍNAS
Tipos de muestras para análisis de ADN, ARN y proteínas.
– Extracción de ADN (a partir de sangre, tejidos o células en cultivo, células bucales,…)
– Extracción de ARN (mediante tiocianato de guanidina, urea-cloruro de lítio, purificación de poli(A)-ARN,
Determinación analítica. Perfil analítico. Cartera de servicios.
– Determinación de ácidos nucleicos
– Separación analítica y preparativa del ADN (electroforesis analítica, geles de agarosa, …)
Errores más comunes en la manipulación de las muestras.
– Identificación y etiquetado de las muestras
– Contaminación (por RNAsas, DNA,…)
– Degradación enzimática
Características generales de la obtención y procesamiento de muestras para análisis de ADN, ARN y proteínas.
– Obtención de ADN y ARN a partir de tejidos líquidos (anticoagular)
– Inhibidores RNAsas
Prevención de riesgos en la obtención, manipulación y procesamiento de muestras biológicas.
– Recepción o toma de muestras. Medidas preventivas
– Precauciones generales relativas al laboratorio
– Precauciones durante el desarrollo del trabajo
– Reglas de higiene personal
UNIDAD DIDÁCTICA 2. CONSERVACIÓN Y TRANSPORTE DE MUESTRAS BIOLÓGICAS PARA ANÁLISIS DE ADN, ARN Y PROTEÍNAS
Etiquetado e identificación de las muestras.
Sistemas y formatos de archivos. Sistemas de almacenamiento.
Equipos de almacenamiento (-20ºC, – 80º C)
Transporte de muestras (ADN: descongeladas, tubos estabilizadores ARN, tiempo de transporte recomendado 72 horas. ARN, congelado mediante agentes crioprotectores y con inhibidores de ARNAsas).
Prevención de riesgos en la conservación y transporte de muestras biológicas.
– Precauciones durante el desarrollo del trabajo
– Reglas de higiene personal
– Almacenamiento de muestras biológicas. Zonas de acceso restringido. Contenedores específicos. Manejo con EPIs
– Transporte de material biológico. Sistema básico de embalaje. Identificación
UNIDAD DIDÁCTICA 3. BIOLOGÍA MOLECULAR: ADN, ARN Y PROTEÍNAS
Composición molecular, estructura y función de los ácidos nucleicos.
– Composición química y estructura de los ácidos nucleicos: Nucleótidos de importancia biológica y Factores que estabilizan la doble hélice
– Funciones de los ácidos nucleicos
Descripción de las enzimas asociadas a los ácidos nucleicos.
– Endonucleasas (Tipo 1 y 2)
– Polimerasas
– Ligasas
– Nucleasas
– Fosfatasas
– Quinasas
– ARNasas
Replicación del ADN.
– Modo semiconservativo
– Horqueta de replicación
– Enzimas que intervienen en el proceso
– Molécula accesoria: Iniciador
Transcripción del ADN y su control.
– Proceso: Cadena molde o antisentido. ARNm o transcripto primario. Enzima que dirige: polimerasa de ARN
– Modificaciones postranscripcionales.
Mecanismos de reparación del ADN.
– Agentes genotóxicos y mecanismos de reparación del DNA
– Reparación de dímeros de pirimidinas mediante fotoreactivación
– Remoción de grupos metilo
– Bases mal apareadas
– Metilación del DNA
– Reparación del DNA durante o después de su replicación
– Reparación de cortes en ambas cadenas del DNA
– Sistemas De reparación de DNA: NER (Nucleotide Excision Repair)
– Mecanismos de reparación de DNA: BER (Base escisión Repair)
Mutaciones del ADN, alteraciones en las proteínas que sintetizan y enfermedades asociadas.
– Alteraciones que puede sufrir el ADN: Mismatch (mal apareamiento), Desaminación, Pérdida de bases, Unión covalente entre bases de la misma cadena, Unión de grupos alquilo, Ruptura de simple cadena (nick) y Ruptura de doble cadena
– Alteraciones en las proteínas que se sintetizan y enfermedades asociadas. Desnaturalización
Estructura y función de las proteínas.
– Aminoácidos y neurotransmisores
– Enlaces peptídicos, oligopeptidos y polipeptidos
– Estructura primaria, secundaria , terciaría y cuaternaria
– Funciones de las proteínas: estructural, reguladora, de transporte, de reserva, enzimática, mensajera y de receptores químicos
Transcripción y traducción.
– Moléculas implicadas en la transcripción y traducción de las proteínas
– Fases de la transcripción de las proteínas
– Fases de la traducción de las proteínas
– Regulación de la transcripción y traducción
Síntesis y modificación de las proteínas.
– Moléculas implicadas en la síntesis y traducción de las proteínas
– Fases de la síntesis de las proteínas
– Fases de la modificación de las proteínas
– Regulación de la síntesis y modificación de las proteínas
Alteraciones conformacionales de las proteínas.
– Serpinopatías
– Proteínas priónicas
– Neuroserpinas
– Hemoglobina
– Repeticiones de glutamato
– Proteína Tau
– Inmunoglobulinas cadenas ligeras
– Proteína CFRT Péptido B-amiloide
– Superóxido dismutasa
– B2 microglobulina
UNIDAD DIDÁCTICA 4. METODOLOGÍA APLICADA A LA SEPARACIÓN E IDENTIFICACIÓN DE PROTEÍNAS
Electroforesis.
– Tipos de electroforesis: unidimensionales, bidimensionales y técnicas relacionadas.
– Separación electroforética de las proteínas séricas. Patrones de normalidad y de alteración
– Características del material y de los reactivos. Averías o disfunciones
Técnicas cromatográficas.
– Características de los equipos. Condiciones de uso y mantenimiento
– Calibración. Averías o disfunciones
– Características del material y de los reactivos
Técnicas de inmunodetección.
– Inmunocitoquímica
– Western blot
– Inmunoprecipitación
– Co-inmunoprecipitación
– Pull-down
– TUNEL
Espectrometría de masas.
– Fundamento y aplicaciones.
– Características de los equipos.
– Condiciones de uso y mantenimiento. Calibración. Averías o disfunciones.
– Características del material y de los reactivos.
Tecnología de microarrays y chips de proteínas.
– Microarrays de ADN: Diseño de un microarrays de ADN. Tipos
– Microarrays de Proteínas: Diseño de un microarrays de proteínas. Tipos
– Microarrays de Carbohidratos: Diseño de microarrays de carbohidratos. Aplicaciones
– Microarrays de Células
– Microarrays de Tejidos
– Perspectivas de mercado de los microarrays y biochips en el área de salud humana
Bioinformática. Bases de datos de proteómica.
– Genómica funcional
– Relación entre la biología y la informática
– Biochips
– Bioinformática
– Bibliografía
UNIDAD FORMATIVA 2. ANÁLISIS DE ÁCIDOS NUCLEICOS
UNIDAD DIDÁCTICA 1. METODOLOGÍA APLICADA AL ANÁLISIS DE ÁCIDOS NUCLEICOS
Extracción. Purificación y análisis espectroscópico y electroforético de ácidos nucleicos.
– Material y métodos
Amplificación de ADN mediante PCR y variantes.
– El ADN
– Los enzimas
– Los nucleótidos
– Los cebadores
– Limitaciones y problemas de la PCR (tamaño secuencias limitado, PCR previa, contaminación, inespecifidad de cebadores,…)
Electroforesis y técnicas relacionadas.
– Factores que afectan a la movilidad del ADN en el gel (masa molecular, voltaje, composición de las bases, temperatura, solución amortiguadora,…)
– Tipos de electroforesis: PFGE (Pulsed Field Gel Electroforesis), OFAGE (Orthogonal Field Alternative Gel), FIGF (Field Inversion Gel Electroforesis), CHEF (Contour Clamped Homogeneus Electric Field), Electroforesis preparative.
– Aplicaciones: Análisis comparativos de patrones de restricción cromosómicos, construcción de mapas cromosómicos, topología y tamaño de cromosomas, análisis de elementos extracromosómicos
Hibridación de ácidos nucleicos.
– Factores que influyen en la hibridación.
– Composición de las bases.
– Concentración de ADN/ARN y tiempos Cot y Rot
– Concentración y tamaño de la sonda
– Concentración ADN diana
– Desnaturalización del ADN diana y fijación a un soporte.
– Marcaje de una sonda monocadena
– Hibridación: mezcla y renaturalización
– Detección de los híbridos
– Medio de reacción
– Polímeros inertes
– Tiempos de hibridación y mecanismos de detección.
– Tipos de hibridación (soporte sólido, en fase líquida, in situ, in situ sobre cromosomas, in situ de bacterias para clonaje).
Análisis de fragmentos de ADN.
– Método Southerm
– Métodos de transferencia (por capilaridad, por vacío, electroforético)
– Aplicaciones del Método Southerm
– Mapas de restricción
– Detección de polimorfismos (RFLP, VNTR, STR) y deleciones.
Secuenciación.
– Secuenciación química, método de Maxam y Gilbert
– Secuenciación enzimática, método de Sanger o de los dideoxinucleótidos.
– Tipos de secuenciaciones enzimáticas (Cíclica, múltiple, automática, quimioluminiscente)
Tecnología de microarrays y chips de ácidos nucléicos.
– Utilidad: analizar el genoma completo de un organismo
– Fundamento: hibridación con sondas
– Soporte: placas microtitulación o membranas de blotting
– Fabricación: pueden ser creados en el laboratorio o usando robótica : Macroarray: señales > 300 micras y Microarray: pocillos < 200 micras
Aplicaciones: identificación de secuencias (genes, Mutaciones), determinación del nivel de expresión génica, descubrimiento de genes, diagnóstico de enfermedades, Farmacogenómica: desarrollo de Fármacos y Toxicogenómica: investigación Toxicológica
Bioinformática. Bases de datos de genómica.
– Introducción a la Bioinformática
– Consulta de Bases de datos en biología molecular
– Alineamiento de secuencias
– Predicción de genes
– Introducción a los microarrays de DNA
UNIDAD DIDÁCTICA 2. PRINCIPIOS GENERALES DE ENFERMEDADES DE BASE GENÉTICA
Genoma: células, cromosomas y genes.
– Definición de genoma, gen y cromosoma
– Organización, estabilización y localización del genoma
Estructura y función de los genes y cromosomas.
– Estructura del ADN
– Estructura del ARN
– El código genético
– Secuencias codificantes versus no codificantes
Bases cromosómicas de la enfermedad.
– Citogenética. El cariotipo normal en los roedores de laboratorio
– Anomalías del número de cromosomas (Heteroploidías)
– Anomalías de la estructura de los cromosomas
Herencia y enfermedad: enfermedades monogénicas, patrones de herencia, enfermedades poligénicas. Susceptibilidad genética.
– Genético
– Congénito
– Hereditario
Genética de las enfermedades comunes.
– Modelos provenientes de mutaciones espontáneas o inducidas
– Modelos generados por transgénesis
– Modelos generados in Vitro por manipulación de células ES
– Modelos generados por transgénesis condicional
Genética de la reproducción y del diagnóstico prenatal.
– Modelos animales del desarrollo embrionario
– Diagnóstico prenatal rápido de aberraciones cromosómicas por PCR
– Diagnóstico citogenético
– Diagnóstico prenatal de enfermedades hereditarias
Diagnóstico en medicina legal y forense.
– VNTR
– STR
Modelos animales de enfermedad de base genética.
– Modelos murinos de enfermedades hereditarias simples (mendelianas): Desórdenes de la visión, de la audición, neurológicos y neuromusculares. Enfermedades de los huesos y cartílagos, de la piel y el pelo, hematológicas, inmunodeficiencias y metabólicas
– Modelos murinos de enfermedades hereditarias complejas (multigénicas): Cáncer, obesidad, diabetes, etc.
UNIDAD FORMATIVA 1. TÉCNICAS DE SEPARACIÓN DE ADN, ARN Y PROTEÍNAS DE MUESTRAS BIOLÓGICAS
UNIDAD DIDÁCTICA 1. OBTENCIÓN, MANIPULACIÓN Y PROCESAMIENTO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS PARA ANÁLISIS DE ADN, ARN Y PROTEÍNAS
Tipos de muestras para análisis de ADN, ARN y proteínas.
– Extracción de ADN (a partir de sangre, tejidos o células en cultivo, células bucales,…)
– Extracción de ARN (mediante tiocianato de guanidina, urea-cloruro de lítio, purificación de poli(A)-ARN,
Determinación analítica. Perfil analítico. Cartera de servicios.
– Determinación de ácidos nucleicos
– Separación analítica y preparativa del ADN (electroforesis analítica, geles de agarosa, …)
Errores más comunes en la manipulación de las muestras.
– Identificación y etiquetado de las muestras
– Contaminación (por RNAsas, DNA,…)
– Degradación enzimática
Características generales de la obtención y procesamiento de muestras para análisis de ADN, ARN y proteínas.
– Obtención de ADN y ARN a partir de tejidos líquidos (anticoagular)
– Inhibidores RNAsas
Prevención de riesgos en la obtención, manipulación y procesamiento de muestras biológicas.
– Recepción o toma de muestras. Medidas preventivas
– Precauciones generales relativas al laboratorio
– Precauciones durante el desarrollo del trabajo
– Reglas de higiene personal
UNIDAD DIDÁCTICA 2. CONSERVACIÓN Y TRANSPORTE DE MUESTRAS BIOLÓGICAS PARA ANÁLISIS DE ADN, ARN Y PROTEÍNAS
Etiquetado e identificación de las muestras.
Sistemas y formatos de archivos. Sistemas de almacenamiento.
Equipos de almacenamiento (-20ºC, – 80º C)
Transporte de muestras (ADN: descongeladas, tubos estabilizadores ARN, tiempo de transporte recomendado 72 horas. ARN, congelado mediante agentes crioprotectores y con inhibidores de ARNAsas).
Prevención de riesgos en la conservación y transporte de muestras biológicas.
– Precauciones durante el desarrollo del trabajo
– Reglas de higiene personal
– Almacenamiento de muestras biológicas. Zonas de acceso restringido. Contenedores específicos. Manejo con EPIs
– Transporte de material biológico. Sistema básico de embalaje. Identificación
UNIDAD DIDÁCTICA 3. BIOLOGÍA MOLECULAR: ADN, ARN Y PROTEÍNAS
Composición molecular, estructura y función de los ácidos nucleicos.
– Composición química y estructura de los ácidos nucleicos: Nucleótidos de importancia biológica y Factores que estabilizan la doble hélice
– Funciones de los ácidos nucleicos
Descripción de las enzimas asociadas a los ácidos nucleicos.
– Endonucleasas (Tipo 1 y 2)
– Polimerasas
– Ligasas
– Nucleasas
– Fosfatasas
– Quinasas
– ARNasas
Replicación del ADN.
– Modo semiconservativo
– Horqueta de replicación
– Enzimas que intervienen en el proceso
– Molécula accesoria: Iniciador
Transcripción del ADN y su control.
– Proceso: Cadena molde o antisentido. ARNm o transcripto primario. Enzima que dirige: polimerasa de ARN
– Modificaciones postranscripcionales.
Mecanismos de reparación del ADN.
– Agentes genotóxicos y mecanismos de reparación del DNA
– Reparación de dímeros de pirimidinas mediante fotoreactivación
– Remoción de grupos metilo
– Bases mal apareadas
– Metilación del DNA
– Reparación del DNA durante o después de su replicación
– Reparación de cortes en ambas cadenas del DNA
– Sistemas De reparación de DNA: NER (Nucleotide Excision Repair)
– Mecanismos de reparación de DNA: BER (Base escisión Repair)
Mutaciones del ADN, alteraciones en las proteínas que sintetizan y enfermedades asociadas.
– Alteraciones que puede sufrir el ADN: Mismatch (mal apareamiento), Desaminación, Pérdida de bases, Unión covalente entre bases de la misma cadena, Unión de grupos alquilo, Ruptura de simple cadena (nick) y Ruptura de doble cadena
– Alteraciones en las proteínas que se sintetizan y enfermedades asociadas. Desnaturalización
Estructura y función de las proteínas.
– Aminoácidos y neurotransmisores
– Enlaces peptídicos, oligopeptidos y polipeptidos
– Estructura primaria, secundaria , terciaría y cuaternaria
– Funciones de las proteínas: estructural, reguladora, de transporte, de reserva, enzimática, mensajera y de receptores químicos
Transcripción y traducción.
– Moléculas implicadas en la transcripción y traducción de las proteínas
– Fases de la transcripción de las proteínas
– Fases de la traducción de las proteínas
– Regulación de la transcripción y traducción
Síntesis y modificación de las proteínas.
– Moléculas implicadas en la síntesis y traducción de las proteínas
– Fases de la síntesis de las proteínas
– Fases de la modificación de las proteínas
– Regulación de la síntesis y modificación de las proteínas
Alteraciones conformacionales de las proteínas.
– Serpinopatías
– Proteínas priónicas
– Neuroserpinas
– Hemoglobina
– Repeticiones de glutamato
– Proteína Tau
– Inmunoglobulinas cadenas ligeras
– Proteína CFRT Péptido B-amiloide
– Superóxido dismutasa
– B2 microglobulina
UNIDAD DIDÁCTICA 4. METODOLOGÍA APLICADA A LA SEPARACIÓN E IDENTIFICACIÓN DE PROTEÍNAS
Electroforesis.
– Tipos de electroforesis: unidimensionales, bidimensionales y técnicas relacionadas.
– Separación electroforética de las proteínas séricas. Patrones de normalidad y de alteración
– Características del material y de los reactivos. Averías o disfunciones
Técnicas cromatográficas.
– Características de los equipos. Condiciones de uso y mantenimiento
– Calibración. Averías o disfunciones
– Características del material y de los reactivos
Técnicas de inmunodetección.
– Inmunocitoquímica
– Western blot
– Inmunoprecipitación
– Co-inmunoprecipitación
– Pull-down
– TUNEL
Espectrometría de masas.
– Fundamento y aplicaciones.
– Características de los equipos.
– Condiciones de uso y mantenimiento. Calibración. Averías o disfunciones.
– Características del material y de los reactivos.
Tecnología de microarrays y chips de proteínas.
– Microarrays de ADN: Diseño de un microarrays de ADN. Tipos
– Microarrays de Proteínas: Diseño de un microarrays de proteínas. Tipos
– Microarrays de Carbohidratos: Diseño de microarrays de carbohidratos. Aplicaciones
– Microarrays de Células
– Microarrays de Tejidos
– Perspectivas de mercado de los microarrays y biochips en el área de salud humana
Bioinformática. Bases de datos de proteómica.
– Genómica funcional
– Relación entre la biología y la informática
– Biochips
– Bioinformática
– Bibliografía
UNIDAD FORMATIVA 2. ANÁLISIS DE ÁCIDOS NUCLEICOS
UNIDAD DIDÁCTICA 1. METODOLOGÍA APLICADA AL ANÁLISIS DE ÁCIDOS NUCLEICOS
Extracción. Purificación y análisis espectroscópico y electroforético de ácidos nucleicos.
– Material y métodos
Amplificación de ADN mediante PCR y variantes.
– El ADN
– Los enzimas
– Los nucleótidos
– Los cebadores
– Limitaciones y problemas de la PCR (tamaño secuencias limitado, PCR previa, contaminación, inespecifidad de cebadores,…)
Electroforesis y técnicas relacionadas.
– Factores que afectan a la movilidad del ADN en el gel (masa molecular, voltaje, composición de las bases, temperatura, solución amortiguadora,…)
– Tipos de electroforesis: PFGE (Pulsed Field Gel Electroforesis), OFAGE (Orthogonal Field Alternative Gel), FIGF (Field Inversion Gel Electroforesis), CHEF (Contour Clamped Homogeneus Electric Field), Electroforesis preparative.
– Aplicaciones: Análisis comparativos de patrones de restricción cromosómicos, construcción de mapas cromosómicos, topología y tamaño de cromosomas, análisis de elementos extracromosómicos
Hibridación de ácidos nucleicos.
– Factores que influyen en la hibridación.
– Composición de las bases.
– Concentración de ADN/ARN y tiempos Cot y Rot
– Concentración y tamaño de la sonda
– Concentración ADN diana
– Desnaturalización del ADN diana y fijación a un soporte.
– Marcaje de una sonda monocadena
– Hibridación: mezcla y renaturalización
– Detección de los híbridos
– Medio de reacción
– Polímeros inertes
– Tiempos de hibridación y mecanismos de detección.
– Tipos de hibridación (soporte sólido, en fase líquida, in situ, in situ sobre cromosomas, in situ de bacterias para clonaje).
Análisis de fragmentos de ADN.
– Método Southerm
– Métodos de transferencia (por capilaridad, por vacío, electroforético)
– Aplicaciones del Método Southerm
– Mapas de restricción
– Detección de polimorfismos (RFLP, VNTR, STR) y deleciones.
Secuenciación.
– Secuenciación química, método de Maxam y Gilbert
– Secuenciación enzimática, método de Sanger o de los dideoxinucleótidos.
– Tipos de secuenciaciones enzimáticas (Cíclica, múltiple, automática, quimioluminiscente)
Tecnología de microarrays y chips de ácidos nucléicos.
– Utilidad: analizar el genoma completo de un organismo
– Fundamento: hibridación con sondas
– Soporte: placas microtitulación o membranas de blotting
– Fabricación: pueden ser creados en el laboratorio o usando robótica : Macroarray: señales > 300 micras y Microarray: pocillos < 200 micras
Aplicaciones: identificación de secuencias (genes, Mutaciones), determinación del nivel de expresión génica, descubrimiento de genes, diagnóstico de enfermedades, Farmacogenómica: desarrollo de Fármacos y Toxicogenómica: investigación Toxicológica
Bioinformática. Bases de datos de genómica.
– Introducción a la Bioinformática
– Consulta de Bases de datos en biología molecular
– Alineamiento de secuencias
– Predicción de genes
– Introducción a los microarrays de DNA
UNIDAD DIDÁCTICA 2. PRINCIPIOS GENERALES DE ENFERMEDADES DE BASE GENÉTICA
Genoma: células, cromosomas y genes.
– Definición de genoma, gen y cromosoma
– Organización, estabilización y localización del genoma
Estructura y función de los genes y cromosomas.
– Estructura del ADN
– Estructura del ARN
– El código genético
– Secuencias codificantes versus no codificantes
Bases cromosómicas de la enfermedad.
– Citogenética. El cariotipo normal en los roedores de laboratorio
– Anomalías del número de cromosomas (Heteroploidías)
– Anomalías de la estructura de los cromosomas
Herencia y enfermedad: enfermedades monogénicas, patrones de herencia, enfermedades poligénicas. Susceptibilidad genética.
– Genético
– Congénito
– Hereditario
Genética de las enfermedades comunes.
– Modelos provenientes de mutaciones espontáneas o inducidas
– Modelos generados por transgénesis
– Modelos generados in Vitro por manipulación de células ES
– Modelos generados por transgénesis condicional
Genética de la reproducción y del diagnóstico prenatal.
– Modelos animales del desarrollo embrionario
– Diagnóstico prenatal rápido de aberraciones cromosómicas por PCR
– Diagnóstico citogenético
– Diagnóstico prenatal de enfermedades hereditarias
Diagnóstico en medicina legal y forense.
– VNTR
– STR
Modelos animales de enfermedad de base genética.
– Modelos murinos de enfermedades hereditarias simples (mendelianas): Desórdenes de la visión, de la audición, neurológicos y neuromusculares. Enfermedades de los huesos y cartílagos, de la piel y el pelo, hematológicas, inmunodeficiencias y metabólicas
– Modelos murinos de enfermedades hereditarias complejas (multigénicas): Cáncer, obesidad, diabetes, etc.