UF2465 INVESTIGACIÓN CON ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN

UNIDAD FORMATIVA 1. INVESTIGACIÓN CON ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN

UNIDAD DIDÁCTICA 1. UTILIZACIÓN DE ANIMALES COMO MODELOS EXPERIMENTALES

1. Justificación de experimentación con animales de laboratorio:
2. – Referencias históricas, momentos y personajes claves en la utilización de animales como modelos experimentales
3. – Logros conseguidos en las ciencias biomédicas
4. – Búsqueda de otras alternativas. Razones científicas y éticas
5. Principio de las 3Rs:
6. – Reducción
7. – Refinamiento
8. – Reemplazo
9. Clasificación de los métodos alternativos:
10. – Modelos computerizados de predicción «in silico»
11. – Uso de organismos inferiores.
12. – Uso de huevos
13. – Métodos «in Vitro»
14. – Otros
15. Aspectos éticos y normativos de los cuidados proporcionados a los animales de experimentación.
16. – Transformación, limitación y percepción social
17. – Actitud del investigador frente al animal como sujeto
18. – Reconocimiento del animal como reactivo biológico
19. – Obtención de animales biológicamente estandarizados
20. Normativa sobre protección de animales utilizados para experimentación y otros fines científicos: seguridad, administración, transporte, recepción, aprovisionamiento de animales y eliminación de los cadáveres.
21. – Control social de la investigación
22. – Legislación Nacional y Europea
23. – Aspectos básicos de legislación
24. – Objetivo de la legislación
25. Normativa sobre: acreditación, elaboración y cumplimiento de los procedimientos de los laboratorios de ensayos clínicos.
26. – Seguimiento de Protocolos Normalizados de Procedimientos
27. Prevención de riesgos laborales en los procedimientos experimentales con animales:
28. – Niveles de bioseguridad
29. – Técnicas y prácticas de laboratorio
30. – Equipos de seguridad biológica.
31. Análisis de signos y comportamiento animal anómalos que interfieran en los procedimientos.
32. – Detección del dolor, signos de sufrimiento y angustia de animales de experimentación, siguiendo Protocolos Normalizados de revisión
33. – Conocimiento del aspecto normal de las distintas especies animales
34. – Pautas de observación del animal: Aspecto exterior, sonidos, movimientos, comportamiento y relación social
35. – Observación de la jaula o habitáculo, del lecho, cantidad de comida y agua ingerida, etc.
36. – Determinación cualitativa de la alteración de parámetros fisiológicos: pérdida o aumento de peso, ritmo de la respiración, temperatura, etc.

UNIDAD DIDÁCTICA 2. ADMINISTRACIÓN DE SUSTANCIAS EN LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN

1. Administración de sustancias:
2. – Soluciones a administrar, principales solventes.
3. – Características de las soluciones, concentración, osmolaridad y pH.
4. Clasificación de las vías de administración de sustancias:
5. – Enteral
6. – Parenteral
7. – Tópica
8. – Inhalatoria
9. Factores para la elección de la vía:
10. – Velocidad de absorción de sustancias
11. – Tolerancia
12. – Facilidad de su administración según recursos materiales y humanos
13. Relación de material existente en el mercado:
14. – Jeringas, conexiones, catéteres y sondas
15. – Agujas: tipos y escala de medición
16. – Bombas de infusión mecánicas y electrónicas
17. – Bombas de infusión osmótica o volumétricas
18. – Pomadas y geles
19. – Vaporizadores y nebulizadores
20. Selección del material necesario para la administración de sustancias en función de:
21. – Sustancia a administrar.
22. – Volumen
23. – Especie animal
24. – Vía de inoculación
25. Volumen máximo de inyección según:
26. – Especie animal
27. – Vía de administración
28. Inmovilización de los animales para la administración de sustancias.
29. – Manejo e inmovilización minimizando estrés
30. – Material de inmovilización
31. Administración crónica de sustancias.
32. – Sistemas de infusión continua: anclados y ambulatorios

UNIDAD DIDÁCTICA 3. OBTENCIÓN DE FLUIDOS Y TEJIDOS CORPORALES DE LOS ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN

1. Extracción de sangre:
2. – Volumen máximo de extracción, según vía y especie animal
3. – Técnica de recogida de sangre
4. Métodos de extracción de sangre, ventajas e inconvenientes:
5. – Exanguinación
6. – Decapitación
7. – Del corazón
8. – De venas
9. – De arterias
10. – Métodos no recomendados de venopunción
11. – Obtención repetida de sangre: Cateterización
12. Formas de obtención de otros fluidos corporales:
13. – Heces y orina: jaulas metabólicas o sondas
14. – Líquido cefalorraquídeo
15. – Bilis
16. – Linfa.
17. – Líquido ascítico
18. Realización de eutanasia
19. – Definición y aspectos relacionados
20. – Métodos de eutanasia adecuados según la especie y la experimentación
21. – Identificación de equipos, instrumental y Materiales necesarios
22. Asistencia a una necropsia:
23. – Técnicas de necropsia siguiendo procedimientos establecidos
24. – Preparación del instrumental y material necesarios
25. – Recogida de muestras
26. – Registro de datos
27. Conocimiento de la normativa de:
28. – Protección frente a agentes químicos, biológicos y radiológicos
29. – Tratamiento y eliminación de residuos
30. Acciones para una correcta gestión de residuos:
31. – Segregación (recogida selectiva).
32. – Transporte y almacenamiento en la instalación
33. – Tratamiento previo a la eliminación
34. – Eliminación del residuo en la instalación productora o gestor autorizado

UNIDAD DIDÁCTICA 4. REGISTRO DE DATOS DE INVESTIGACIÓN EN EXPERIMENTACIÓN ANIMAL

1. Monitorización: determinación y registro de variables fisiológicas
2. – Exploración clínica: observación palpación y auscultación
3. – Uso de equipos: Métodos invasivos y no invasivos
4. Análisis de los resultados obtenidos en un procedimiento experimental
5. – Uso de programas informáticos específicos para el procedimiento experimental.
6. – Análisis estadístico en función del tipo de parámetro
7. Registro de tratamientos o de administración de sustancias y de obtención de muestras.
8. – Establecimiento previo al procedimiento del sistema de recogida de datos
9. – Características de un registro de datos: escrito o automatizado, duradero (copias de seguridad), completo, accesible, hojas específicas o bases de datos debidamente confeccionadas según datos, normalizados, establecer responsable de la conservación del archivo, etc.
10. Clasificación de los sistemas de instrumentación según sus objetivos:
11. – De adquisición de la información
12. – Diagnósticos
13. – De evaluación
14. – De monitorización y control
15. Identificación de los componentes del sistema global animal-instrumento:
16. – Animal: diferentes generadores de señales
17. – Estímulos: Visuales, acústicos, táctiles, eléctricos, etc.
18. – Transductor: sensibilidad, linealidad, respuesta en frecuencias (lineal, integrador y diferenciador) y rendimiento
19. – Equipo de tratamiento o procesado de una señal
20. – Equipo de presentación, lectura o registro: registros mecánicos o electrónicos
21. – Equipo de control automático de los estímulos, de los transductores, etc.
22. Problemas y soluciones en la medición de la actividad de los seres vivos:
23. – Inaccesibilidad de las variables
24. – Variabilidad de los datos
25. – Interrelaciones entre variables
26. – Interacción entre órganos y sistemas
27. – Efecto del transductor sobre la medición a realizar
28. – Artefactos en las medidas
29. – Limitaciones de la energía
30. Utilización de transductores para la medida de las principales variables biológicas:
31. – Temperatura
32. – Fuerza, desplazamiento, velocidad y aceleración
33. – Presión sanguínea
34. – Volumen y presión respiratoria
35. – Flujo en gases
36. – Flujo en líquidos
37. Medición de señales biológicas por biotelemetría:
38. – Objetivo
39. – Ventajas
40. – Componentes de un sistema de biotelemetría
41. Utilización de procedimientos no quirúrgicos con equipos específicos de estudio o medida de variables:
42. – Diagnóstico por imagen.
43. – Telemetría
44. – Estudios de comportamiento
45. – Pletismografía
46. – Otros métodos no invasivos